細(xì)胞培養(yǎng)被支原體污染是個世界性問題，在細(xì)胞培養(yǎng)中支原體感染發(fā)生率達(dá)到63%。支原體是一類無細(xì)胞壁，形態(tài)呈高度多形性，為圓形、絲狀或梨形，其直徑僅有0.13～0.18μm，變形能力大，故能通過濾菌器，tu出的結(jié)構(gòu)特征是沒有細(xì)胞壁，對作用于細(xì)胞壁生物合成的抗生素不敏感。研究表明，支原體能耗盡營養(yǎng)物，促進(jìn)代謝積累，導(dǎo)致pH改變，對細(xì)胞造成多種影響，包括生長狀況、生化特性、代謝、免疫、以及細(xì)胞存活等多方面的改變，繼而干擾實驗結(jié)果，或造成無法解釋的差異。加不幸的是拯救被感染的細(xì)胞幾乎是不可能的。

那如何檢測你的細(xì)胞是否收到支原體的入侵呢？下面介紹了幾種檢測方式，或許對你的實驗有用。

分離培養(yǎng)法

分離培養(yǎng)法是支原體檢測的金標(biāo)方法，其檢測度高。這種方法是從可疑的細(xì)胞培養(yǎng)體系中取樣，并接種到適宜支原體生長的瓊脂平板上。如果樣本中含有支原體，它們就會在這種瓊脂平板上feng狂生長，終形成明顯可見的特征性菌落。分離培養(yǎng)法基本不會出現(xiàn)假陰性結(jié)果，因此被譽為支原體檢測金標(biāo)準(zhǔn)。

但是，分離培養(yǎng)法也存在兩個弊端，一是檢測時間太長，支原體要長出明顯克隆至少需要4周時間。二是盡管可以檢測絕大多數(shù)支原體種類，分離培養(yǎng)法也有力所不及的時候，例如支原體M. hyorhinis。

DNA檢測法，也稱直接培養(yǎng)法

將可疑樣品與指示細(xì)胞共同培養(yǎng)，一般需要幾天時間。DNA檢測所用的指示細(xì)胞通常是細(xì)胞質(zhì)區(qū)域較大的Vero細(xì)胞，如果原樣本中含有支原體，那么當(dāng)細(xì)胞DNA被熒光染料（如Hoechst染料）染色時，就可以在指示細(xì)胞的核周圍觀察到熒光斑點或熒光顆粒。

但是這種方法靈敏度太低，當(dāng)檢測成陽性時，細(xì)胞經(jīng)常已經(jīng)嚴(yán)重污染。且Hoechst熒光染色：操作復(fù)雜，操作不當(dāng)易造成假陽性或假陰性。

PCR法

市面上有許多商機(jī)提供基于PCR的支原體檢測試劑盒，如GeneCopoeia。這種方法已經(jīng)比較成熟，應(yīng)用的范圍也較為廣泛。

PCR法采用針對支原體DNA的引物用PCR檢測可疑樣本，其PCR引物可特異擴(kuò)增支原體基因組中rDNA保守序列，包括所有已知的支原體，及細(xì)胞培養(yǎng)過程普遍遇到的種屬，例如M. arginini、M. arthritidis、M. bovis、M. fermentans、M. genitalium、M. hominis、M. hyorhinis、M. neurolyticum、M. orale、M. pirum、M. pneumoniae、M. pulmonis、M. salivarium 和U. urealyticum。在凝膠電泳過程中，支原體DNA會顯示為特異性條帶，以此指示支原體的存在。

PCR法快速，簡便，具有強(qiáng)擴(kuò)增能力和極高的敏感性，可以檢測大多數(shù)支原體，但謹(jǐn)慎起見好同時使用另一種檢測方法來進(jìn)行驗證。PCR法檢測支原體只需幾個小時，是快但也是不靈敏的支原體檢測方法。

酶學(xué)檢測

酶學(xué)檢測是將可疑樣本添加到特定底物中，在這一體系內(nèi)支原體的酶可以將ADP轉(zhuǎn)化為ATP，隨后能利用ATP發(fā)光的luciferase酶就可以指示支原體的存在。

后，建議進(jìn)行定期檢測

支原體感染會影響細(xì)胞的正常生長，因此對培養(yǎng)細(xì)胞定期進(jìn)行支原體檢測非常重要。一般來說每1至3個月就應(yīng)該進(jìn)行一次支原體檢測。將定期支原體檢測常規(guī)化堅持下去，是細(xì)胞培養(yǎng)實驗室應(yīng)對支原體感染的關(guān)鍵